高通量测序（NGS）技术的发展以及实验通量的不断增加，要求NGS上游样本处理步骤尽可能简便，以提高NGS整个流程的工作效率。转座系统具有快速“剪切、粘贴”、“复制、粘贴”的功能，已被创新应用于NGS领域，如ATAC-Seq（Assay for Transposase-Accessible Chromatin with highthroughput sequencing，利用高通量测序检测转座酶易接近的染色质），LIANTI（Linear Amplification via Transposon Insertion，通过转座子的线性放大），单倍体分型，结构变异检测等，不仅高效简便，有效缩短NGS样本建库时间，实现规模化快速测序，提高测序分辨率，同时能够被灵活改造，应用于更多的技术创新。
图 移花接木——剪切，粘贴
1. 转座因子的发现
20世纪40年代，美国遗传学家芭芭拉.麦克林托克（Barbara McClintock）在某些玉米籽粒中发现了玉米色素显现着一些稀奇古怪的模式。她观察到玉米籽粒颜色的遗传很不稳定，有时籽粒上还出现一些斑斑点点。通过耐心的记录和仔细的分析，她发现使籽粒着色的色素基因是在某一特定代上“接上”或“拉断”的。1951年，在冷泉港生物学专题讨论会上，麦克林托克递交了自己的学术论文，向科学界同行报告了她的新理论，提出遗传基因可以转移，能从染色体的一个位置跳到另一个位置，甚至从一条染色体跳到另一条染色体上。她把这种能自发转移的遗传基因称为“转座因子”，并于1983被授予诺贝尔医学奖。
转座因子的发现改变了人们对基因组序列稳定性的认识。自此以后，人们已经在生物界各个领域证实了转座子系统的广泛存在，并将转座子系统开发成为各种生物基因分析的有效工具之一，极大促进了遗传学的发展。
图 Barbara McClintock
转座因子（转座子）根据其功能是“复制-粘贴”还是“剪切-粘贴”分为I型转座子和II型转座子两类。I型转座子的转座中间体是RNA，II型转座中间体是DNA。II型转座子，尤其是来源于细菌的Tn5转座子，是NGS领域最常用的转座子。
2. 转座子Tn5的转座事件
Tn5转座子是一种细菌转座子，最早由E. coli中发现，是一段含有若干抗性基因和编码转座酶基因的DNA片段（a）。其中IS50R和IS50L的序列高度同源，只是IS50L的一个碱基存在突变。IS50具有19bp的倒置末端（外末端outside end，OE和内末端inside end，IE），两末端倒置有7个碱基不同。此倒置末端是转座酶（Tnp）的作用位点。IS50L和IS50R均含有编码转座酶（TnP）以及转座阻遏蛋白（lnh）的基因，但由于IS50L中的碱基突变，造成翻译提前终止，所以仅有IS50R可以产生正常的有活性的TnP和lnh。
图 Tn5转座子结构
转座事件发生时，两个转座酶（Tnp）分子（绿色标注）结合到Tn5转座子的OE末端（黄色标注），形成两个Tnp-OE复合体，随后两个复合体通过Tnp的C末端相互作用进行联会，形成一个Tn5转座复合体，此时Tnp产生切割DNA的活性。随后Tnp利用切割活性，经过一系列化学反应切除供体DNA，离开供体链。当结合到靶DNA上时，Tn5转座复合体识别并攻击靶序列（Target site），将转座子插入到靶序列中，粘性末端通过DNA聚合酶、连接酶作用进行填补，两端形成9bp正向重复序列。整个转座过程完成了基因从原始DNA被剪切之后粘贴在另一受体DNA的过程，实现了基因的“跳跃”。
图 Tn5转座机理
3. 转座子Tn5用于NGS文库构建
NGS文库构建即把DNA样本片段化或筛分成指定长度的目标序列，再加上寡核苷酸接头P5、P7（和条形码Barcode），用于后续测序上机。传统建库方式需要经过DNA片段化、末端修复、接头连接、文库扩增、多次纯化分选等步骤，耗时较长，将Tn5用于测序文库构建时，可将DNA片段化、末端修复、接头连接等多步反应转变为1步反应，极大缩短建库时间，提高工作效率。
Tn5用于NGS建库的体外转座要素包含：转座子的末端序列、靶DNA、转座酶（Tnp）和Mg2+（激活剂），转座法建库形成的文库结构如下：
图 转座法建库文库结构
将P5、P7端部分接头序列（Adapter 1/2）+转座子末端序列设计合成供体DNA，Tnp识别转座子末端形成带有P5、P7端部分接头的Tn5转座复合体（见下图）。该复合体识别受体DNA的靶序列（Target site），切断受体DNA，并插入携带的供体DNA，形成一端带有P5部分接头Adapter 1，一端带有P7部分接头Adapter 2的DNA，之后通过PCR加上Barcode以及接头其余部分，形成含P5端与P7端完整接头的DNA文库。
图 Tn5转座系统用于文库构建
4. Tn5转座的前沿应用
1）ATAC-Seq
ATAC-seq，全称为Assay for Transposase-Accessible Chromatin with highthroughput sequencing，即利用高通量测序检测转座酶易接近的染色质）的技术。真核生物的核DNA并不是裸露的，而是有蛋白质即组蛋白与之相结合的。DNA一圈一圈得缠绕在组蛋白上，形成串珠式的结构。而这样的结构还能够进一步折叠、浓聚，并在其他架构蛋白的辅助下，形成染色体。当需要进行DNA的复制或者转录时，DNA的折叠结构会被打开形成可接近区域，此时，ATAC-seq技术使用Tn5转座酶进入并切割下暴露的DNA并同时连接上特异性的Adapters，连接上Adaptors的DNA片段被分离出来用于二代测序，从而获得大量的细胞系和组织样本基因表达、转录调控、转录修饰等的信息。相对其他如MNase-seq，FAIRE-seq和DNase-seq等染色质研究方法来说，ATAC-seq具有快速、样本需求量少、一次性获得全基因组上的染色质开放区域等优势，在表观遗传学具有广阔的发展前景。
图 ATAC-seq原理
延伸阅读：
[1] Buenrostro JD, Giresi PG, Zaba LC, Chang HY, Greenleaf WJ. Transposition of native chromatin for multimodal regulatory analysis and personal epigenomics. Nature methods. 2013;10(12):1213-1218. doi:10.1038/nmeth.2688.
[2] Buenrostro, JD., Wu, B., Chang, H. Y.&Greenleaf, W. J. ATAC-seq: A Method for Assaying Chromatin Accessibility Genome-Wide. Curr. Protoc. Mol. Biol. 109, 21.29.1-9 (2015).
[3] Combining ATAC-seq with nuclei sorting for discovery of cis-regulatory regions in plant genomes. Nucleic Acids Research, 2017.
2）LIANTI
LIANTI，全称为Linear Amplification via Transposon Insertion，即通过转座子的线性放大，是一项经过改良的单细胞全基因组扩增（whole-genome amplification，WGA）方法。 LIANTI法首先利用Tn5转座子结合LIANTI序列，形成Tn5转座复合体（含T7启动子），之后该复合体随机插入单细胞基因组DNA，经转座后，将DNA随机片段化并连接T7启动子。随后T7启动子行使体外转录功能，用转录获得大量线性扩增的转录本，转录本再经过逆转录之后得到大量的扩增产物，随后进行正常的建库测序操作。整个过程仅进行线性扩增，没有进行指数扩增，大大增强了扩增稳定性，降低PCR干扰，此外，该技术将该放法将测量拷贝数的空间分辨率提高了3个数量级（能在千碱基分辨率进行微CNV检测，基因组覆盖率可达到97%），助力更有效、更精准地检测出更多遗传疾病。
图 LIANTI原理
延伸阅读：
[1] Chen, C., Xing, D., Tan, L., Li, H., Zhou, G., Huang, L., & Xie, X. S. (2017). Single-cell whole-genome analyses by Linear Amplification via Transposon Insertion (LIANTI). Science, 356(6334), 189-194.
5. 结语
转座参与的普通建库技术，有效缩短了建库时间，满足了测序市场对大规模样本处理速度的需求，而转座参与的特定研究方向建库技术，如ATAC-Seq、LIANTI、CPT-seq等，则更多的满足了科研人员们对于科学研究的需求。目前转座子/转座酶的技术应用在NGS领域还只是冰山一角，相信未来转座酶/转座子的可改造性会为NGS提供了更多的可能。
6. 参考文献
Single-cell whole-genome analyses by Linear Amplification via Transposon Insertion (LIANTI).
ATAC-seq: A Method for Assaying Chromatin Accessibility Genome-Wide.
Transposons Tn10 and Tn5.
Structure/function insights into Tn5 transposition.
Transposons: Mobile DNA.- 本文固定链接: https://maimengkong.com/learn/1139.html
- 转载请注明: : 萌小白 2022年8月6日 于 卖萌控的博客 发表
- 百度已收录
